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	<title>基因诊断与性病/PCR实验中常见问题对策 - 版本历史</title>
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		<summary type="html">&lt;p&gt;以“{{Hierarchy header}} 所有实验结果都有成功或失败，实验的失败可能是应该出结果而没有出，我们把它称作&lt;a href=&quot;/index.php?title=%E5%81%87%E9%98%B4%E6%80%A7&amp;amp;action=edit&amp;amp;redlink=1&quot; class=&quot;new&quot; title=&quot;假阴性（页面不存在）&quot;&gt;假阴性&lt;/a&gt;，不该出结...”为内容创建页面&lt;/p&gt;
&lt;p&gt;&lt;b&gt;新页面&lt;/b&gt;&lt;/p&gt;&lt;div&gt;{{Hierarchy header}}&lt;br /&gt;
所有实验结果都有成功或失败，实验的失败可能是应该出结果而没有出，我们把它称作[[假阴性]]，不该出结果而出了结果我们把它称为[[假阳性]]。PCR实验中最常见的问题就是假阴性和假阳性问题。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
（一）假阴性：出现假阴性结果最常见的原因是：Taq [[DNA]][[聚合酶]]活力不够，或活性受到抑制；[[引物]]设计不合理；提取的模板质量或数量不过关以及PCR系统欠妥当；循环次数不够。所以在实验中出现假阴性失败时，首先在原来[[扩增]]的产物中再加入Taq DNA聚合酶、增加5-10次循环，一般都会获得成功。如果没有成功应检查PCR扩增仪的温度是否准确，[[采集标本]]是否有问题。为了防止假阴性的出现在选用Taq DNA聚合酶时，要注意用活力高质量好的酶。同时在提取PCR模板时，应特别注意防止污染抑制[[酶活性]]物质（如酚、[[氯仿]]）的存在。尽管Taq DNA聚合酶对模板纯度要求不高，但也不允许有破坏性有机[[试剂]]的污染。PCR扩增的先决条件及特异性是引物与靶DNA良好的互补，尤其是要绝对保证引物的3′端与靶[[基因]]的互补。对[[变异]]较大的扩增对象，宜采用巢式（Nested）PCR或double PCR。在进行PCR操作时应注意[[Mg]]2+的浓度要合理。PCR反应的各温度点的设置要合理。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
（二）假阳性：PCR结果的假阳性是对被检测[[标本]]而言，而反应系统中所扩增的产物是真实的。因为PCR技术高度灵敏，极其微量的靶基因污染都会造成大量扩增，而造成结果判断上的失误，所以污染是PCR假阳性的主要根源。PCR的污染主要是标本间的交叉污染和[[扩增子]]的污染。出现假阳性结果的另一种可能是样品中存在有靶基因的[[同源]]序列。为了避免因污染而造成的假阳性，PCR操作时要[[隔离]]不同操作区、分装试剂、简化操作程序，使用一次性吸头。&lt;br /&gt;
{{Hierarchy footer}}&lt;br /&gt;
{{基因诊断与性传播疾病图书专题}}&lt;/div&gt;</summary>
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