112.247.109.102：以“{{Hierarchy header}} 检验方法建立的基本要素是特异性和灵敏度，在复杂的物体中，使无法感觉的特定物质进入人类的观察范围。...”为内容创建页面

2014-01-26T14:28:48Z

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检验方法建立的基本要素是特异性和灵敏度，在复杂的物体中，使无法感觉的特定物质进入人类的观察范围。[[核酸]]杂交检测技术就是利用核酸[[碱基]]严格配对的特异性，核酸[[标记物]]的灵敏度而建立的检测核酸结构与功能的方法。该法建立以来已有二十年，目前研究实验室用得多，临床实验室用得较少，除成本高外，关键是操作复杂，重复性差，仅能半定量。成本高可随经济发展而缓和，但其它缺点尚需努力克服。

杂交实验的[[探针]]应具有特异性，对应不同的杂交方法靶[[基因]]（被检基因）应有一定的纯度与丰度。[[杂交反应]]的开始是碰撞，探针浓度高则速率增加，一般32P标记探记探针5-100ng/ml，非[[放射性]]探针25-1000ng/ml，[[原位杂交]]无论放射还是非放射物标记，一般都需0.1-5.0μg/ml。当探针过量时，杂交速率取决于探针长度，如一个100ng/ml20个[[核苷酸]]的合成[[寡核苷酸探针]]与1-100pg 1kb长的靶基因杂交，10分钟能达到最大杂交率。而相同条件下2kb的克隆探针需160小时。主要原因是这里所指浓度是重量浓度而非[[摩尔浓度]]。长探针因标记量大，小的摩尔浓度已足以达到需要的检测灵敏度。为了促进长探针（＞250个核苷酸）的杂交速率，加入杂交促进剂是非常必要的。最常用的是[[硫酸]][[葡聚糖]]，使用浓度为5％-10％，浓度过高会增加杂交液粘度。[[聚乙二醇]]也作为促进剂，价廉且粘度低，但检测[[本底]]太高。另外杂交的温度、盐浓度、[[甲酰]]胺浓度可调节杂交[[分子]]形成的稳定性。理论选用[[DNA]]：DNA杂交温度T＝Tm－25℃，此时杂交分子最易形成。但具体实验中影响Tm值的因素很多，一般杂交温度低，形成的杂交分子较稳定。[[RNA]]：DNA杂交分子的Tm大10-15℃，RNA：RNA杂交分子的Tm大20-25℃，使得杂交温度提高，此时需调节甲酰胺浓度来调节杂交温度。好的实验条件最终应在实践中摸索建立。

'''（一）[[斑点杂交]]'''

将少量核酸样品点样在[[硝酸]]纤维素滤膜上，80℃烘烤后可牢固地固定在膜上，再用探针进行杂交。[[尼龙]]膜，特别是[[聚偏氟乙烯膜]]（PVDF）与DNA结合力更高，坚韧、易操作。点样可手工，也可用[[真空]]点样品。检测可用放射性探针自显影或非放射性探针显色。可用于DNA或RNA分析。下面以非放射性探针分析DNA为例，结果是显色。

取硝酸纤维素膜和滤纸在2xSSC(NaCl 300mmol/L，[[柠檬酸钠]]30mmol/L)，pH7.0浸15分钟，平铺滤纸在点样抽滤器上，再铺上硝酸纤维滤膜，真空抽气使点样器减压，膜显出凹面。点样50μl（5-10μgDNA，可直接点[[血清]]样品）于凹面，撤去真空，把膜晾干。取滤纸浸0.5mol/l NaOH，1.0mol/l NaCl，把膜平铺于滤纸上20分钟，变性。取滤纸二张分别浸在0.5mol/l Tris-Hcl pH7.5和1.0mol/l Tris-HCl，0.6mol/l NaCl pH7.5，分别依次把膜平铺于滤纸上，各中和15分钟，中和后膜的pH为7.2-7.5。于80℃，30-45分钟烘干。（RNA分析点样[[缓冲液]]系统不同，无需变性，中和，余大致相同）用塑料[[封口机]]把膜和2.5ml预杂交缓冲液封入塑料袋中，42℃，水浴30分钟。

{| class="wikitable"
| 预杂交缓冲液：
| 65℃6xSSC
| （原液：20xSSPE）
|-
|
| 5xDenhardt
| （50xDenhardt）
|-
|
| 0.5％SDS
| （10％SDS）
|-
|
| 100μg/ml变性鲑精DNA片段
| （1mg/ml）
|-
|
| 42℃增加50％甲酰胺
| （原液），配成20ml.
|}

50xDenhardt：5g聚[[蔗糖]]（Ficoll，400型，Parmacia），5g[[聚乙烯吡咯烷酮]]和5g[[牛血清]][[白蛋白]]（组份Ⅴ，Sigma）加水至500ml。过滤后－20℃保存。

探针2ml（50-100ng/2ml预杂交缓冲液）于100℃，10分钟，马上置冰浴5分钟（变性）。加入袋封口。42℃水浴过夜。去杂交液（可回收）。以2xSSC，0.1％SDS15ml，50℃5分钟洗二次。0.1SSC，0.1％SDS洗二次。封闭：另取袋封入膜和封闭液（[[蛋白质]]50mg/ml，100mmol/l Tris-HCl(pH7.5)/150mmol/LNaCl）2.5ml，37℃，30分钟。去封闭液（可回收）。100mmol/lTris-HCl(pH7.5)/150mmol/L NaCl ，15ml，5分钟洗二次。亲和反应：酶标[[抗体]]3ml（酶有[[碱性磷酸酶]]、[[过氧化物酶]]等，标记物有抗[[地高辛]]、[[生物素]]等，现以地高辛标碱性磷酸酶为例4μg/3ml 100mmol/L Tris-HCl，150mmol/l MgCl2，10mg/ml牛血清白蛋白），封入袋中37℃，30分钟。100mmol/l Tris-Hcl，100mmol/l NaCl，50mmol/l MgCl2，pH9.5，10ml，1分钟洗一次。取硝基[[四氮唑]]兰（NBT）75mg/ml 70％[[二甲基甲酰胺]]25μl，4-溴-5-氯-3-[[吲哚]][[磷酸]]50mg/ml二甲基甲酰胺20μl（[[底物]]）和100mmol/l Tris-HCl，100mmol/l NaCl，50mmol/l MgCl2，pH9.56ml混匀，37℃，避光反应三小时，显色。[[蒸馏水]]洗膜，晾干。观察结果。

'''（二）Southern blot'''

1975年E.Southern发明了将DNA切开，电泳分离，再变性，印迹到硝酸纤维（Nc）滤膜上，用探针进行杂交，检测DNA的方法。自显影或显色用于DNA分析。以32P标记放射性探针为例，[[放射自显影]]观察结果。（图18-6）。

{{图片|gor4vhfq.jpg|Southernblot体系}}

图18-6　Southernblot体系

前述分离、[[纯化]]的DNA样品5-10μg/100μlTE，加[[限制性内切酶]]3Unit/1μgDNA和[[内切酶]]相应缓冲液，在相应温度保温1-3小时（不同的酶所用的缓冲液和温度不同），[[乙醇]]沉淀，15-20μl TE溶解DNA断片。前述电泳条件，与DNA[[分子量]]标准品（Marker，Ladder）一起，3-4V/cm电泳（30V12-15小时）。在紫外光下观察Marker充分分离，结束电泳。将胶放入0.5mol/l NaCl，0.5mol/L NaOH液体中30分钟，使DNA变性。同时将膜用蒸馏水[[浸润]]，在0.5mol/L NaCl，0.5mol/L NaOH液体的方盘皿上，放上滤纸两头浸在液体中，依次放上[[凝胶]]、膜、滤纸、一尺厚的吸水纸，压力1kg的重物。转移（印迹，blot）过夜。翌日，把膜放在0.5mol/l Tris-HCl，pH7.0-7.5，1mol/L NaCl液中，中和膜上碱性变性液15-30分钟。戴上手套，用手指压在膜上来回充分洗膜。室温干燥一小时。用塑料封口机，把膜和预杂交缓冲液封在塑料口袋中，注意驱除袋内汽泡。热水浴过夜。探针变性后，加入袋中再封口。热水浴过夜。

{| class="wikitable"
| 洗膜：
| 2xSSPE，0.5％SDS，总体积200ml，室温30分钟。
|-
|
| 0.4％xSSPE，0.5％SDS，总体积200ml，60℃，30分钟。
|-
|
| 将膜包入塑料袋，在暗室贴在X光底片上。－70℃，自显影1-2天。
|-
|
| 冲片显影，观察结果（背景不清晰可重新洗膜再显影）。
|}

'''（三）Northern blot'''

用于RNA分析，电泳条件与转膜方法与Southern blot不同外，RNA不必变性与中和，电泳时加电醛防止RNA[[发夹结构]]形成。其它步骤相同。

为了防止RNase水解需分析的mRNA，尽可能将器皿在160-180℃干热[[灭菌]]8小时以上，也可加0.1％焦碳酸二乙酯（DEPC）泡2小时，[[灭菌水]]淋洗干净，100℃干烤15分钟。不能干热灭菌的[[试剂]]等，也可加1％DEPC处理12小时（但不能用于Tris）后，100℃。加热15分钟（或[[高压灭菌]]15分钟）以抑制、分解RNase。1.0g[[琼脂糖]]，灭菌水80ml加热溶解。加x50TAE2ml，EB25μl，灭菌水至1000ml。样品缓冲液，x50TAE20μl，50％去离子甲酰胺500μl，[[甲醛]]180μl，混匀。约10-30μg/10μl纯化的RNA样品，加二倍（20μl）样品缓冲液（可点样一个凝胶孔lane）。60℃水浴15min，马上置冰浴。加1/10电泳指示剂。点样电泳，75-80V电泳4-5小时（指示剂泳动7～8cm），结束电泳。电泳期间正负极缓冲液要不断交换（可用[[蠕动]]泵），以免pH改变。电泳结束，将凝胶放在紫外光下可观察到人rRNA大[[亚基]]28S（5.1kb），小亚基18S(2.0kb)，记下大小亚基移动距离（或拍照），可作为被测mRNA分子量分析的参照物。凝胶在50mmol/l NaOH中变性30分钟（低浓度碱，此步可省）。膜在10xSSPE中浸20分钟。用10xSSPE转移过夜（同Southern blot）。80℃1-2小时干燥。用探针杂交后，显影或显色。

'''（四）原位杂交（insituhybridization）'''

在保持细胞形状条件下，进行细胞内杂交，显影或显色。用于DNA或RNA分析。

[[细胞]]用离心[[涂片]]机涂片或[[组织切片]]置于[[载玻片]]上。4％[[多聚甲醛]]（PFA）/PBS固定（固定时间因[[标本]]而异10-20分钟，也可用含2％甲醛，0.05％[[戊二醛]]，2.5mmol/lCaCl2的0.1mol/L磷酸缓冲液pH7.3，500W[[微波]]炉中照射10-20秒，固定）。马上用PBS洗标本三次，2.5μg/ml[[蛋白酶]]K，37℃，5-20分钟（因标本和固定条件而定）处理。[[磷酸盐]]类缓冲液（PBs NaCl 137mmol/l，KCl 2.7mmol/L，[[Na]]2HPO48.1mmol/L，KH2PO41.5mmol/L）洗涤。4％PFA/PBS后固定，PBS洗一次，0.2％[[甘氨酸]]/PBS洗二次，每次15分钟。预杂交：42℃，1小时。预杂交缓冲液：10％硫酸葡聚糖，10％Denhardt液，0.5％[[吐温]]－20，250μg/ml鲑鱼[[精子]]DNA，500μg/ml[[酵母]]tRNA。杂交：42℃，4小时。用2x杂交缓冲液（4xSSC，0.2mol/L[[磷酸钠]]pH6.5，2xDenhardt）溶解已标记探针，使其终浓度为0.1-1.0μg/ml。DNA检测时把探针覆盖在标本上，置100℃5分钟（变性）取出，杂交。mRNA检测则先把探针置95℃水浴3分钟，立即置冰水浴，再覆盖标本上进行杂交。覆盖标本用液量100-200μl洗涤：2xSSC，50℃过夜。0.2xSSC，室温1小时。载玻片浸在缓冲液中。显色（试剂、方法参照斑点杂交的封闭-显色部分）20分钟-2小时，[[显微镜]]下观察结果。
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临床生物化学/核酸杂交技术 - 版本历史

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