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	<title>临床生物化学/方法建立时的条件选择 - 版本历史</title>
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	<updated>2026-04-27T05:16:21Z</updated>
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		<title>112.247.109.102：以“{{Hierarchy header}} 在方法建立的原理确定后，尚需根据其原理来选择合适的条件，以保证所建的方法可靠。下面以亮度法为例介...”为内容创建页面</title>
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		<updated>2014-01-26T14:29:27Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;以“{{Hierarchy header}} 在方法建立的原理确定后，尚需根据其原理来选择合适的条件，以保证所建的方法可靠。下面以亮度法为例介...”为内容创建页面&lt;/p&gt;
&lt;p&gt;&lt;b&gt;新页面&lt;/b&gt;&lt;/p&gt;&lt;div&gt;{{Hierarchy header}}&lt;br /&gt;
在方法建立的原理确定后，尚需根据其原理来选择合适的条件，以保证所建的方法可靠。下面以亮度法为例介绍其条件选择的主要环节。颜色反应是亮度分析的基础，因此，用作亮度测定的颜色反应至少要具备以下几条：反应有较高的特异性，从而干扰小；反应产生的有色物质[[吸光系数]]要大，大者灵敏度高；有色产物的离解度要小，小则稳定；此外，还要求有色产物有恒定的组成成分，使产生的颜色稳定。由于影响颜色反应的因素很多，如温度、pH、[[试剂]]浓度、反应的时间等等。这些因素在建立新方法时都要逐项试验，确定最佳实验条件。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
'''（一）选择合适的吸收光谱'''&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
实际上就是测定颜色反应产生的光吸收曲线。方法是在整个可见光区（400-700nm）以10nm（在接近最大吸收波长范围还应再细分）间隔。分为十几个点测定其在不同波长时的吸光度，然后以吸光度为纵坐标，波长为横坐标绘成光吸收曲线。在条件许可的情况下，应采用双光束[[分光光度计]]在可见光区进行波长扫描，结果较为可靠。同时，还应以同法分别测定其空白液和标准物颜色产物的吸收曲线。测定光吸收曲线的目的是找出最大吸收波长，作为光度法波长选择的依据。因为在最大吸收波长测定，可获得最大灵敏度，且能更符合比耳定律。然而在实际使用中，不能单纯考虑灵敏度高，还要考虑在测定浓度范围能否符合比耳定律，并能在光度计准确区域内（吸光度0.2-0.85之间）读出读数。有时由于测定的最大吸收波长并不是所要测定物质的特性吸收波长，即同时存在具有相似最大吸收的干扰物质，为了保证实验的特异性，常改用特有而非最大吸收波长进行测定。例如用磷钼酸测定[[血糖]]，选用波长420nm，溶液对此波长的吸收比其它波长光线的吸收都低，其目的是使参考值有一个较低的吸收，这样可允许在相同情况下对高出参考值的血糖也能得到准确的读数。因为在这项测定中，[[高血糖]]是常见的变化方向。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
'''（二）测定方法适用的浓度范围'''&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
根据光吸收定律，溶液的吸光度应与溶液的浓度成正比。但由于有色物质的电离、水解、缔合等原因当溶液稀释或增浓时，有色物质颜色的深浅并不按比例降低或增高，因而也就不符合光吸收定律。测定方法适用的浓度范围是指分析的浓度范围在直线线性段，浓度与吸光度之比为一常数，此时直线上任何一点的斜率tanθ相等，即：&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
tanθ＝A1/C1＝A2/C2＝A3/C3＝……＝An/Cn＝K&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
此处K即为校正常数，可用于结果计算。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
通常稀溶液都是符合比耳定律的，但在浓度过高和过低时往往都不呈直线，说明低浓度部分亦有仪器的灵敏度和方法的检测能力限制，所以，具体的测定就宜选择在直线段浓度范围内进行。以此还可用于确定[[标本]]的用量，使具有临床意义的标本测定结果都落在直线范围内。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
'''（三）观察影响颜色反应的因素'''&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
影响颜色反应的主要因素有：溶液pH的影响、杂质的影响、反应的温度和时间、以及颜色的稳定性等。这些都是光度法测定误差的主要来源。都需要通过实验来观察并控制在一个适宜的范围内。从而保证方法的准确性和精密性。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
⒈溶液pH的影响有些溶液的颜色对pH值的改变非常灵敏。例如[[白蛋白]]在pH4左右可与溴[[甲酚]]绿结合后由黄色变成绿色，绿色的深浅与白蛋白浓度成正比，但是溴甲酚绿本身是一种pH指示剂，当pH5.4时即由黄色转变成绿色，在pH3.8时又由绿色变为黄色。在白蛋白与溴甲酚绿结合颜色反应中，如pH控制不好就很容易出现误差，又如每种酶都有各自的最适pH，[[酶促反应]]中，只有在其最适pH时才能发挥充分的[[催化]]活性。因此，在建立方法时可在不同pH值条件下（其它条件不变）令其反应，以观察颜色反应的吸光度变化，从而选择合适的pH值范围来保证颜色反应，以求较高的灵敏度和较好的线性。有时还需用相应的pH[[缓冲液]]来维持反应的pH，以利颜色反应的正常进行。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
⒉杂质的影响由于临床[[生化]]标本中除含待测物质外，还含有许多非测定物质，成分十分复杂，它们有的可与有色产物作用，使产生的颜色逐渐退去，有的与待测物质相类似，也能缓慢地与显色试剂生成有色[[化合物]]或沉淀，有的本身是有色的等，都会影响被测物溶液的颜色。试验方法是将各种可疑物质的纯溶液作标本单独进行测定，如产生颜色反应，这说明该方法的特异性不高。如果将待测物质混入可疑物质作标本测定，改变了被测物质与试剂间的反应，这是干扰（具体方法见第三节）。为此就需要进一步改进方法，或设立标本空白，或将标本作适当处理，除去干扰物，或加入合适的干扰物掩蔽剂等，以提高方法的特异性。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
⒊反应的温度和时间有些有色物质能迅速反应生成，另一些有色物质须经过相当长时间后反应才能完全。提高反应的温度可以加速化学反应，缩短反应的时间。因此，如果在不恰当的温度和时间内进行比色，将会造成相当大的误差。这可以在不同的温度下（如设定25℃，30℃，37℃）令其反应，通过检测吸光度来观察各自反应终点时间（一般达到反应终点，随后测定的吸光度不再变化），以选定适宜临床应用的反应最佳温度和时间。&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
⒋稳定性试验待测物质经显色反应产生的有色物稳定与否，关系到测定结果的可靠性。某些有色物质虽然生成很快，但却不太稳定，放置后色泽会逐步消退或起变化，有些干扰物虽不能与被测物质同时发生颜色反应，但当放置一段时间后也能缓慢地与试剂显色，使溶液颜色加深。因此，在方法建立的同时作稳定性试验很有必要。试验的方法是用被测标本、[[标准溶液]]、空白溶液按方法要求进行显色反应后，即刻及室温放置不同时间，分别测定其吸光度，根据其吸光度的变化确定方法稳定的时间范围。一般要求有色溶液能稳定二小时以上就能满足临床应用的需要。必要时还要加以注明。&lt;br /&gt;
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